Мерење запремине блокова ткива помоћу биолошких микроскопа

Nov 17, 2025

Остави поруку

Мерење запремине блокова ткива помоћу биолошких микроскопа

 

До сада су криофиксација, замрзнути ултра-танки пресеци и{1}}сушење замрзавањем рутинске методе за рендгенску микроскопију ткива и ћелија. Наведите следеће детаље у вези са овом методом:


Биолошки микроскоп са рефлектором може да помера рефлектор горе-доле да би се постигао умерени осветљење, а отвор променљивог отвора бленде се такође може променити да би се постигла умерена осветљеност. Ако је светлост од сунца, рефлектор се може подићи на одговарајући начин и отвор променљивог светла може се повећати на одговарајући начин. Ако је светло прејако, рефлектор се може на одговарајући начин спустити, а отвор раскрснице се може на одговарајући начин смањити. Ако се и даље осећате заслепљујуће у овој ситуацији, можете изабрати да поставите одговарајући филтер на носач испод рефлектора. Овај храст може постићи сјај који вас задовољава. Наравно, подешавањем горњег и доњег положаја рефлектора може се променити величина отвора за очитавање светла и одабрати одговарајуће филтере, што захтева одређени период вежбе и искуства.


Веома важно питање у биолошкој микроскопији је процес узорковања и изоловања ћелија. Након-сушења замрзавањем и уградње смоле (ФД), замрзнути ултра-просеци морају бити пажљиво обрађени како би се осигурало да садржај од 65 елемената сваког дела није оштећен током посматрања и анализе. Због бројних корака и високе цене микроанализе рендгенских зрака, жалосно је извући погрешне закључке ако су анализиране ћелије оштећене или мртве након дужег и више-степеног процеса обраде. Ћелије миокарда одвојене третманом желатиназом имају два облика, један је у облику дугачке шипке-, а други је кружног облика. Ово последње се односи на умируће ћелије које су оштећене током процеса раздвајања ћелија.


Садржај и дистрибуција електролита у ова два типа ћелија су веома различити под биолошким микроскопом. На је веома висок и К је изузетно низак у кружним кардиомиоцитима, а концентрација Ца у линеарним дендритима је веома висока. После провере другим аналитичким методама, доказано је да су високи На и низак К у кружним ћелијама и високи Ца у митохондријама резултат оштећења мембране током раздвајања ћелија. Метода хладне фиксације за ћелије и ткива често укључује прво гашење, а затим њихово складиштење у течном азоту. Фиксација гашења је кључна за ефекат очувања. Живе ћелије или свежа ткива су богата водом, а када се угасе, делови ћелија или ткива који долазе у директан контакт са расхладним средством (посебно када се користи течни азот за хлађење) често се прво замрзавају и фиксирају, формирајући „љуску“ која спречава да се централни део ћелија згњечи и фиксира. Због тога се приликом спровођења рендгенске микроанализе често нађе да кристали леда постоје у централном делу већих ћелија. Да би се спречила ова ситуација, као расхладно средство се користи супстанца са тачком топљења вишом од течног азота, али нижом за 806ц. Има много ових супстанци, али их је лако набавити, а најприступачнији је концентровани пропан (тачка кључања 42,120ц, тачка топљења 187,10ц, молекулска тежина 44,1), који такође има брзу брзину хлађења. Али његов недостатак је што је запаљив.

 

4 Microscope

Pošalji upit